Tallo

Álex Espinosa-Correa

Grupo de Estudios Botánicos GEOBOTA

Universidad de Antioquia
Biología de las Plantas (2025-1)

Además del uso de diversos tejidos vegetales como alimento, ningún tejido vegetal ha desempeñado un papel más indispensable en la supervivencia humana a lo largo de la historia registrada que la madera, o xilema secundario. Evert & Eichhorn (2013).

Los árboles vivos más altos

Fig 1: El árbol vivo más alto registrado es Hyperion (Sequoia sempervirens). Le siguen el Ciprés tibetano del sur n.º I (Cupressus austrotibetica) y Menara (Richetia faguetiana), la angiosperma y el árbol más alto registrado en el trópico. Como referencia, el Edificio Coltejer en Medellín mide 175 metros de altura.

El árbol vivo con mayor volumen

Fig 2: El General Sherman es una secuoya (Sequoiadendron giganteum) considerada el árbol de un solo tronco más grande del mundo. Su volumen se estima en 1,487 m³, con una altura de 83.8 m. La base tiene una circunferencia de 31.3 m y un diámetro de 11.1 m. Marty Aligata, CC BY-SA 4.0 & Elizabeth Wu, National Park Service, Public domain, via Wikimedia Commons.

Los árboles vivos de mayor diametro

Fig 3: A. El Árbol del Tule (Taxodium mucronatum) posee el tronco de mayor diámetro del mundo: 11,62 m (9,38 m sin incluir los contrafuertes). B. El segundo era el Baobab de Sunland (Adansonia digitata), con un diámetro de 10,64 m, al menos hasta que se dividió.

Los árboles vivos más longevos

Fig 4: No está claro cuál es el árbol no clonal más longevo. A. Se estima que Matusalén (Pinus longaeva) tiene 4856 años. B. Mientras que el Gran Abuelo (Fitzroya cupressoides) tendría entre 3654 y 5484 años. C. Por otra parte, Pando (Populus tremuloides), con una antigüedad estimada entre 16 000 y 80 000 años, es considerado el árbol clonal más longevo.

La monocotiledónea más alta/larga

Fig 5: A. La palma de cera (Ceroxylon quindiuense) es la monocotiledónea más alta, alcanzando entre 45 y 60 m de altura. B. Por su parte, la palma trepadora Calamus manan puede llegar a extenderse hasta 240 m de longitud.

Cuerpo primario de la planta

Fig 6: Diagrama de una planta vascular joven. Evert & Eichhorn (2013).
Fig 7: Distribución de los tejidos primarios en una planta vascular. Evert & Eichhorn (2013).

Vastago

El término «vástago» se utiliza no solo como un término colectivo para estos dos órganos vegetativos (tallo y hojas), sino también para expresar su íntima asociación física y de desarrollo. Evert & Eichhorn (2013).

  • Comprende el tallo y las hojas, constituye la porción aérea de la planta
  • Inicia en el embrión como una plúmula o solo como meristema apical
  • Estructuralmente más complejo que la raíz
    • Presenta nudos y entrenudos donde se insertan las hojas
    • El ápice del vástago genera hojas y yemas axilares
    • El ápice de la raíz no produce órganos laterales
    • El tallo desvía haces vasculares hacia las hojas, dejando lagunas foliares
  • Soporte: elevación de hojas y estructuras reproductivas
  • Fotosíntesis: elaboración de fotosintatos
  • Conducción: transporte de fotosintatos (floema) y agua/minerales (xilema)

Tallo: estructura generalmente cilíndrica que lleva las hojas, con funciones típicas en el soporte y elevación de las hojas y estructuras reproductivas, así como en la conducción de agua, minerales y azúcares; en las plantas vasculares, se deriva inicialmente del epicótilo del embrión y crece generalmente hacia arriba. Simpson (2019).

Fig 8: Pastes del vastago. Megías-Pacheco et al. (2017).
Fig 9: Rama de Gossypium hirsutum (algodón mexicano). Arbo & Gonzalez (2019).

Meristema apical caulinar

  • Estructura dinámica
    • Añade células al cuerpo primario de la planta
    • Produce primordios foliares y primordios de yemas
  • No tiene una cobertura protectora como la raíz
  • El meristema apical caulinar origina tres meristemas primarios:
    • Protodermo (epidermis)
    • Procámbium (tecidos vasculares primarios)
    • Meristema fundamental (tejido fundamental)
  • Fitómero: conjunto de nudo, entrenudo y yema axilar
Fig 10: El meristema apical está protegido por hojas jóvenes que lo rodean Evert & Eichhorn (2013).
Fig 11: Ápice de un tallo de Coleus. A. Procámbium. B. Meristema fundamental. C. Laguna foliar. D. Tricoma. E. Meristema apical. F. Primordio foliar en desarrollo. G. Primordio foliar. H. Yema axilar. I. Tejido vascular en desarrollo. Jon Houseman, CC BY-SA 4.0, via Wikimedia Commons.

Dos modelos explican el crecimiento del vastago

  • Teoría de zonación
    • Zona de células madre centrales: células que rara vez se dividen y dan lugar a las células de las otras zonas
    • Zona periférica: células en rápida división y genera primordios foliares y a otras partes del tallo, además de protodermis, procámbium y meristema fundamental (cortéx)
    • Zona medular: produce células que forman parte del meristema fundamental y la médula
  • Teoría túnica-cuerpo
    • Túnica: capas externas de células iniciales (L1 y L2), producen la protodermis. División anticlinal
    • Cuerpo: capa L3 y células derivadas, forma el procámbium y el meristemo fundamental. División anticlinal y periclinal
Fig 12: Organización del meristema apical del vástago en zonas y capas. Nabors (2006).

Estructura primaria del tallo

  • Epidermis
  • Córtex
    • Parénquima
    • Esclérenquima
    • Colénquima
  • Estela (cilindro vascular)
    • Xilema primario
    • Floema primario
  • Médula
    • Parénquima
Fig 13: Estructura primera del tallo en Eudicotyledoneae y Monocotyledoneae. Educational Research & Training (2024).

Estela y haces vasculares

  • Haz vascular: cordón de tejido que contiene xilema primario y floema primario (y procambio, si aún está presente), frecuentemente rodeado por una vaina de parénquima o fibras.
    • Radial
    • Colateral
    • Bicolateral
    • Concéntrico
  • Estela: distribución espacial del sistema vascular primario de un tallo, organizado en disposiciones de xilema y floema.
    • Protoestela
    • Sifonoestela
    • Eustela
    • Atactostela
Fig 14: Diposición y patrón de los haces vasculares. Megías-Pacheco et al. (2017).

Haz vascular: tipos

Fig 15: Tipos de haces vasculares. B. Anficribal o perifloemático. B. Anfivasal o perixilemático. C. Bicolateral. D. Colateral abierto. E. Colateral cerrado. Alzate-Guarín et al. (2025).

Tallo primario: comparación

Fig 16: Comparación entre diferentes tipos de estelas. Nabors (2006).

Monocotyledoneae vs Eudicotyledoneae

(a) Tallo de maíz (Zea mays).
(b) Tallo de ranúnculo (Ranunculus sp.).
Fig 17: Comparación entre un tallo de Monocotyledoneae y Eudicotyledoneae. Megías-Pacheco et al. (2017).

Trazas y lagunas foliares

  • Traza foliar: porción de un haz vascular que se extiende desde la base de la hoja hasta su conexión con un haz vascular en el tallo.
  • Laguna foliar: en las plantas con semilla, región de tejido de parénquima en el cilindro vascular primario del tallo, situada por encima del punto de origen de una o varias trazas foliares.
Fig 18: Traza y laguna foliar en Euphyllophyta. Simpson (2019).
Fig 19: Sistema vascular primario en el tallo. A. Corte transversal. B.Vista longitudinal. Evert & Eichhorn (2013)

Tallo vs Raíz

  • Los tallos pueden distinguirse de las raíces de al menos tres maneras
    • Meristema apical caulinar no está cubierto por una capa protectora externa
    • Células epidérmicas del tallo no forman estructuras semejantes a los pelos radicales
    • Tallos producen hojas de manera exógena; no se forman órganos de manera endógena
  • Los tallos aéreos de muchas plantas carecen de endodermis
Fig 20: Diferencias en la organización de los haces vasculares entre la raíz primaria y el tallo primario. Megías-Pacheco et al. (2017).
Fig 21: Zona de transición entre el tallo y la raíz. Nabors (2006).

Estructura secundaria: tejidos

  • Peridermis
    • Súber
    • Felógeno
    • Felodermis
  • Córtex
  • Haces vasculares
    • Xilema secundario
    • Floema secundario
    • Cámbium vascular
  • Medula
Fig 22: Transformación de un tallo con peridermis en un tallo con ritidoma. Megías-Pacheco et al. (2017).
Fig 23: Tejidos presentes en tallo con crecimiento secundario. Megías-Pacheco et al. (2017).

Cámbium vascular

  • Células meristemáticas: Altamente vacuoladas, a diferencia de las iniciales del meristemo apical
  • Dos tipos de células iniciales:
    • Iniciales fusiformes: Orientadas verticalmente, alargadas, de forma aplanada o de ladrillo en corte transversal
    • Iniciales de los radios: Orientadas horizontalmente, ligeramente alargadas
  • La división periclinal de las iniciales produce xilema secundario (hacia el interior) y floema secundario (hacia el exterior)
Fig 24: Relación del cámbium vascular con el xilema secundario y el floema secundario. Evert & Eichhorn (2013)

Crecimiento secundario del tallo

Fig 25: Tallo con crecimiento secundario de la vid (Vitis vinifera). Megías-Pacheco et al. (2017).

Crecimiento secundario del tallo

Fig 26: Tallo con crecimiento secundario de pino (Pinus sp.). Megías-Pacheco et al. (2017).

Crecimiento secundario del tallo: desarrollo

Fig 27: Desarrollo del tallo en una angiosperma leñosa. A. Etapa temprana del desarrollo primario. B. Al finalizar el crecimiento primario. C. Origen del cámbium vascular. D. Después de la formación de algo de xilema secundario y floema secundario. E. Al final del primer año de crecimiento, mostrando el efecto del crecimiento secundario. Nabors (2006).

Crecimiento secundario del tallo: desarrollo

Fig 28: A. Dos haces vasculares y el parénquima localizado entre ellos. B. El cámbium vascular usualmente no se forma hasta que una porción del tallo o la raíz tiene varias semanas o incluso varios meses de edad. Mauseth (2016).

Tallo vs Raíz

Fig 29: Crecimiento del tallo y de la raíz. Nabors (2006).

Tallo vs Raíz

Fig 30: Comparación entre un tallo y una raíz con crecimineto secundario. Alda (2010).

Crecimiento secundario del tallo: resumen

Fig 31: Esquema de los meristemos y tejidos presentes en el crecimiento primario y secundario. Nabors (2006).

Estructura secundaria: partes

  • Corteza
    • Peridermis
      • Súber
      • Felógeno
      • Felodermis
    • Córtex
    • Floema primario
  • Cámbium vascular
  • Madera (xilema secundario)
    • Albura
    • Duramen
  • Médula
Fig 32: Diagrama que muestra los tejidos básicos de una sección transversal de un tronco de árbol común. Brer Lappin, Public domain, via Wikimedia Commons.
Fig 33: Partes del tallo con crecimiento secundario. Nabors (2006).

Corteza

Fig 34: A. Corteza delgada y descamada. B. Corteza rugosa tipo estopa. C. Corteza escamosa. D. Corteza profundamente surcada. Evert & Eichhorn (2013)
Fig 35: Saca del corcho de Quercus suber. Cazalla Montijano, Juan Carlos, CC BY-SA 3.0, via Wikimedia Commons.

corteza: término no técnico aplicado a todos los tejidos situados fuera del cámbium vascular de un tallo leñoso.

Estructura externa

Fig 36: Características externas de los tallos leñosos. Evert & Eichhorn (2013)

Anillos de crecimiento

Acumulación de xilema (o floema) secundario durante una única temporada de crecimiento, siendo evidente debido a la diferencia estructural entre las últimas células de la madera de verano y las primeras células de la madera de primavera subsiguiente. Simpson (2019).

Fig 37: Tallo con crecimiento secundario. Evert & Eichhorn (2013).
Fig 38: Tronco de una secuoya gigante, Andrew E. Douglass como escala. State Museum (s.f.).

Dendrocronología: estudio científico de la anatomía de la madera para deducir detalles sobre acontecimientos pasados.

Anillos de crecimiento

Fig 39: El número de anillos varía con la distancia sobre el nivel del suelo. Pinus longaeva son los árboles vivos más antiguos que han permanecido de pie continuamente. Evert & Eichhorn (2013).

Crecimiento anómalo

Término bajo el cual se han agrupado las conformaciones cambiales, los productos cambiales y los números cambiales que difieren de la condición “normal” más común, un cambium cilíndrico único que produce floema externamente y xilema internamente. Carlquist (2001).

Fig 40: A. El cambium en dos lados opuestos de esta Bauhinia está produciendo células rápidamente. B. Las tiras del cambium vascular de la artemisa (Artemisia tridentata) mueren periódicamente, mientras que las regiones circundantes del cambium permanecen vivas. Mauseth (2016).
Fig 41: Crecimiento anómalo en tallo de Bougainvillia. Tomado de Spicer & Groover (2010).

Tallos modificados

Fig 42: Algunos tallos modificados. Nabors (2006).

Tallos modificados

Fig 43: Tipos de tallo . (l .s . = sección longitudinal). Simpson (2019).

Referencias

Alzate-Guarín, F. A., Cardona-Naranjo, F. A., & Espinosa-Correa, Á. (2025). Biología de las plantas: manual de laboratorio. Universidad de Antioquia. https://alexespinosaco.github.io/biologia-plantas-manual/
Arbo, M. M., & Gonzalez, A. M. (2019). Botánica Morfológica. http://www.biologia.edu.ar/botanica/index.html
Carlquist, S. (2001). Comparative Wood Anatomy. Springer Berlin Heidelberg. https://doi.org/10.1007/978-3-662-04578-7
Educational Research, S. C. of, & Training. (2024). Botany: higher secondary first year. Tamil NaduTextbook; Educational Services Corporation. https://drive.google.com/file/d/19JqySksC7N30qQdcjdhJXgqvfc3xeyOD/view
Evert, R. F., & Eichhorn, S. E. (2013). Raven biology of plants (Eighth edition). W.H. Freeman; Company Publishers.
Mauseth, J. D. (2016). Botany: an introduction to plant biology (6.ª ed.). Jones & Bartlett Learning. https://books.google.com.co/books?id=0oWkDAAAQBAJ
Megías-Pacheco, M., Molist-García, P., & Pombal-Diego, M. Á. (2017). Atlas de histología vegetal y animal. https://mmegias.webs.uvigo.es/
Nabors, M. W. (2006). Introducción a la botánica. Pearson Educación, S.A.
Simpson, M. G. (2019). Plant systematics (Third edition). Academic Press, an imprint of Elsevier.
Spicer, R., & Groover, A. (2010). Evolution of development of vascular cambia and secondary growth. New Phytologist, 186(3), 577-592. https://doi.org/10.1111/j.1469-8137.2010.03236.x